近10年来，免疫检查点抑制剂（ICI）在肿瘤治疗领域取得了重大突破。2011年，第一个靶向细胞毒性T淋巴细胞抗原4（CTLA-4）的ICI伊匹单抗（Ipilimumab）获得美国食品药品监督管理局（FDA）批准用于晚期黑色素瘤的治疗，此后多个靶向程序性死亡受体1及其配体（PD-1/PD-L1）及淋巴细胞激活基因-3（LAG-3）的ICI陆续上市^[1-2]。

虽然ICI在多种转移性、难治性恶性肿瘤中获得了持久反应性，但患者对于ICI单药的响应率仅为20%～40%^[3-4]。而ICI治疗产生的免疫相关不良事件及获得性耐药均可导致疾病进展^[4]，因此，与其他治疗方式联合成为ICI治疗的新方向^[2]。

研究表明，外照射放疗（EBRT）可引起肿瘤细胞DNA损伤、信号转导调节以及肿瘤免疫微环境（TIME）重塑^[5]。EBRT通过均匀的低传能线密度（LET）射线，包括X射线及γ射线（0.2 keV/μm），以高吸收剂量率（1～2 Gy/min）靶向照射部位^[6]，导致肿瘤细胞DNA损伤，激活cGAS-STING-IRF3-Type Ⅰ干扰素(IFN)信号级联反应，招募调节性T细胞（Tregs）、髓源性抑制细胞（MDSC）等免疫抑制细胞，诱导适应性免疫反应^[7-8]，同时引起TIME中PD-L1表达上调，负性调节肿瘤浸润T细胞引起肿瘤耐药或复发^[5,9]。

因此，多个研究证明了EBRT与ICI的协同作用^[10-11]。Twyman-Saint等^[12]发现，PD-L1抗体的加入可逆转EBRT联合CTLA-4抗体引起的T细胞耗竭，增加黑色素瘤对联合治疗的响应率。然而EBRT作为一种局部治疗方式，即便通过免疫介导引起“远隔效应”，也仅有少数患者能因此获益^[13-14]。

靶向放射性核素治疗（TRT）是一种内放射治疗，其中放射性药物通过全身给药特异性定位于靶点，向肿瘤传递细胞毒性辐射。TRT以低吸收剂量率（＜1 Gy/h）长时间照射靶部位，射线的类型与放射性核素有关，包括α、β粒子及俄歇电子。

LET及最大穿透深度也与核素衰变类型相关，α粒子具有较高的LET（50～230 keV/μm）和较小的穿透深度（50～100 μm）；β粒子则具有更低的LET（0.2 keV/μm）和几十至数百个细胞（mm级别）的穿透距离；俄歇电子的LET为4～25 keV/μm，组织穿透最大深度＜1 μm^[6]。

因此，EBRT对于TIME的调节作用不能简单地外推至TRT^[15-16]。研究发现，高剂量TRT诱导DNA双链断裂，可上调膜联蛋白A1及钙网蛋白^[17]，激活Ⅰ型IFN，其幅度和时间过程与EBRT相当,而低剂量的TRT则表现出明显的免疫调节作用，包括促炎细胞因子及细胞毒性T细胞（CTLs）的浸润^[18-19]。

然而，EBRT通过同源重组、非同源末端连接及碱基切除修复诱导DNA双链修复，TRT却通过跨损伤合成修复受损的DNA^[20]。同时，Grzmil等^[20]通过蛋白质组学研究发现，EBRT与TRT诱导了不同信号通路的激活，TRT主要影响表皮生长因子受体、丝裂原活化蛋白激酶、整合素和雌激素受体的信号转导。

本文将聚焦于该领域最新研究进展，对TRT联合PD-L1抗体治疗的模式及其机制进行综述，以期指导临床实践。

1 靶向治疗放射性药物联合ICI治疗

1.1 β核素放射性药物联合ICI治疗

1.1.1 碘［¹³¹I］

¹³¹I 衰变发射β粒子及γ光子，是最早用于TRT的放射性核素。Rouanet等^[17]比较了131I-ICF01012与ICI的不同组合方案，发现无论是否加入PD-1/PD-L1抗体，对于治疗效果均无显著影响，但观察到了TRT联合CTLA-4抗体后T细胞衰竭相关基因CD274、LAG3和Eomes增加。而¹³¹I-MnO₂-BSA作为一种放射增敏剂，可改善肿瘤乏氧，诱导肿瘤细胞免疫原性死亡，上调PD-L1的表达，抑制原发及转移瘤的生长^[21]。

1.1.2 钇［⁹⁰Y］

⁹⁰Y具有纯β发射、能量强、半衰期短的特点，在Patel等^[19]的研究中，发现中等剂量的EBRT与低剂量⁹⁰Y-NM600（1.85 MBq）对于提高ICI疗效的作用是互补的。具体来说，联合治疗增加了总免疫细胞、CTLs、效应记忆T细胞（TEM）和γδ T细胞的数量，进而增加IFN-γ分泌，起到缓解肿瘤负担及减少自发转移的作用，联合中等剂量EBRT诱导远隔效应，可进一步缓解原发及转移瘤负担^[19]。

另有研究将此策略应用于Lewis肺癌模型治疗，仅用EBRT联合CTLA-4抗体治疗能够减少肿瘤转移，但在联合了⁹⁰Y-NM600治疗后，能达到肿瘤完全缓解并诱导免疫记忆^[22]。但Potluri等^[23]研究发现，⁹⁰Y-NM600联合PD-1抗体治疗对前列腺癌无效，其原因是PD-1抗体激活了Tregs，从而可导致免疫抑制。

1.1.3 镥［¹⁷⁷Lu］

¹⁷⁷Lu是最常用的TRT核素，其标记的探针¹⁷⁷Lu-DOTATATE^[24]和¹⁷⁷Lu-PSMA-617^[25]已获得美国FDA批准分别用于神经内分泌瘤及转移性去势抵抗性前列腺癌（mCRPC）。其中¹⁷⁷Lu-DOTATATE联合纳武单抗（Nivolumab）的Ⅰ期临床试验证明了其安全性，在晚期神经内分泌肿瘤及广泛期小细胞肺癌中显示出抗肿瘤效果，总缓解率为14.3%（NCT03325816）^[26]。

¹⁷⁷Lu-DOTATATE与伊匹单抗、纳武单抗联合使用在转移性Merkel细胞癌^[27]、侵袭性垂体瘤患者^[28]中能够安全且有效地缓解肿瘤进展。目前仍有几项¹⁷⁷Lu-DOTATATE联合PD-1/PD-L1抗体治疗多种恶性肿瘤的临床试验（NCT04261855，NCT03457948，NCT05583708，NCT05142696，NCT04525638）正在进行中。

Prasad 等^[29]在帕博利珠单抗（Pembrolizumab）或奥拉帕尼（olaparib）治疗无效的前列腺癌患者中，联合使用¹⁷⁷Lu-PSMA-617治疗后前列腺特异性抗原水平趋于稳定。目前联合¹⁷⁷Lu-PSMA-617及ICI用于mCRPC患者治疗的多项临床试验（NCT03805594，NCT03658447，NCT05150236）正在开展中。

Chen等^[30]用¹⁷⁷Lu-EB-RGD联合多剂量PD-L1抗体在鼠结直肠癌模型中诱导CD8⁺T细胞浸润，显著抑制了肿瘤生长，且提出TRT与ICI的给药时间窗对于治疗效果至关重要的观点。在此基础上，本研究团队进一步探索了¹⁷⁷Lu-DOTA-EB-cRGDfK（¹⁷⁷Lu-DER）联合治疗的给药策略，在体内外证明了放射性核素刺激后PD-L1表达呈时间及剂量依赖性上调，在TRT后4 h通过尾静脉注射PD-L1抗体能够大大提高联合治疗的疗效，联合治疗组小鼠血清促炎细胞因子、CTLs及CD4⁺辅助T细胞（helper T cells, Th1）浸润增加，肿瘤完全缓解并获得特异性免疫记忆效应^[31]。随后用⁶⁴Cu-DOTA-EB-cRGDfK（⁶⁴Cu-DER）验证了该给药策略的有效性，提示该策略可推广至不同的放射性核素标记的探针中^[32]。

此外，¹⁷⁷Lu-DOTA-Folate^[33]、¹⁷⁷Lu-DOTA-Y003^[34]、¹⁷⁷Lu-h8C3^[35]、¹⁷⁷Lu-LLP2A^[36]及¹⁷⁷Lu-DNP-DOTA-BSA^[37]联合ICI治疗均可抑制肿瘤生长并延长荷瘤小鼠生存期。

1.2 α核素放射性药物联合ICI治疗

1.2.1 锕［²²⁵Ac］

由于α射线独特的优势，包括能量高、射程短、能够诱导DNA双链不可修复的断裂等^[38]，α-TRT成为新的研究热点。与β-TRT相比，α-TRT剂量极低，²²⁵Ac-PSMA-617（30 kBq）联合PD-1抗体在RM1-PGLS模型中能够抑制肿瘤生长，达到部分完全缓解^[39]。然而²²⁵Ac-DOTA-anti-PD-L1 Ab （14.8 kBq）联合PD-L1抗体（322 μg）同时给药却降低了小鼠的生存率^[40]。

1.2.2 砹［²¹¹At］

多聚ADP核糖聚合酶靶向的探针²¹¹At-MM4导致的DNA损伤，激活了先天免疫反应，CD4⁺、CD8⁺ T细胞及巨噬细胞浸润增加，联合PD-1抗体治疗U87MG脑胶质瘤模型达到了完全缓解，65 d无进展^[41]。

Zhang等^[42]开发的基于锰基纳米的放射免疫治疗促进剂²¹¹At-ATE-MnO2-BSA，联合了α-TRT、化学动力治疗及PD-L1抗体治疗。研究发现，²¹¹At-ATE-MnO2-BSA激活了树突状细胞（DCs），与PD-L1抗体联合使用可进一步增加CTLs、促炎细胞因子及 TEM浸润，有效抑制了肿瘤的生长、转移及复发^[42]。

1.2.3 镭［²²³Ra］

二氯化镭（Xofigo,²²³RaCl₂）经美国FDA批准已用于治疗mCRPC的骨转移，²²³Ra处理后促进了CTLs的杀伤作用，增加了主要组织相容性复合体（MHC）-Ⅰ和钙网蛋白的表达^[43]。

在临床研究中发现，经²²³Ra治疗的患者免疫抑制性T细胞（表达TIM-3、PD-L1和PD-1)比例增加，同时Tregs及MDSC浸润增加，联合PD-L1抗体能够改善治疗效果^[44-45]。

在一项Ⅰb期临床研究（NCT02814669）中，评估了²²³Ra联合阿替利珠单抗（Atezolizumab）在mCRPC患者中的安全性和有效性，但联合治疗并未表现出更好的疗效，所有治疗组的中位总生存期为16.3个月，中位无进展生存期为3个月，但却增加了治疗相关毒性^[46]。同时研究也发现产生治疗相关不良反应主要与阿替利珠单抗有关，因此目前正在进行的其他临床研究将Xofigo与帕博利珠单抗（NCT03996473）、纳武单抗（NCT04109729）或阿维单抗（NCT04071236）联合使用，用于晚期前列腺癌及非小细胞肺癌的骨转移治疗。

1.2.4 其他α核素

联合治疗的给药策略也是影响疗效的重要因素，剂量分割是提高EBRT联合ICI的常见方案，而对于α-TRT，一次给药效果优于多次给药。²¹²Pb-VMT01联合CTLA-4及PD-1抗体治疗后，43%的肿瘤完全缓解，而接受多次给药方案的肿瘤最终发生进展^[47]。

Nosanchuk等^[48]则发现，基于²¹³Bi的α-TRT与联合CTLA-4抗体的治疗效果无差异。²¹³Bi的免疫调节作用依赖于损伤相关的分子模式（DAMPs）的释放并激活DCs，治疗后肿瘤组织Tregs下调，白细胞介素（IL） -2、趋化因子C-C-基元配体 (CCL) -5及IFN-γ短暂上调，产生肿瘤杀伤作用^[49-50]。

相似的机制在²²⁷Th中也得到了验证，MSLN-TTC处理后IL-6、CCL20、CXCL10和STING相关基因在体外上调，DAMPs上调导致DCs活化^[51-52]。MSLN-TTC治疗后检测到CD103⁺ DCs迁移及CTLs的浸润，联合PD-L1抗体后进一步增强这种效应，并观察到IFN-γ、CCL3、CCL4、IL-2、IL-5和IL-10的上调，部分肿瘤完全缓解^[51]。

2 靶向诊断放射性药物联合ICI治疗

据文献报道，高剂量的经典诊断探针2-［¹⁸F］FDG (74-148 MBq)治疗可抑制肿瘤生长并适度延长生存期，提示诊断核素在肿瘤治疗中具有较大潜力^[53-55]。

如图1所示，本研究团队创新性地采用2-［¹⁸F］FDG联合PD-L1抗体治疗荷瘤小鼠，以静脉注射37 MBq或18.5 MBq 2-［¹⁸F］FDG后4 h联合400 μg PD-L1抗体治疗为一个疗程，两个疗程后（d0及d4）部分肿瘤完全缓解（5/8或4/8），且治愈后再次接种肿瘤细胞未发现肿瘤生长^[56]。

图1 2-［¹⁸F］FDG联合PD-L1 ICI治疗可显著延缓肿瘤生长，提高荷瘤小鼠总生存期

A.MC38荷瘤小鼠的治疗程序和时间表示意图；B.不同治疗组MC38荷瘤小鼠的个体肿瘤生长情况以及90 d存活率(αP指PD-L1抗体剂量为10 mg/kg，αP^##指PD-L1抗体剂量为20 mg/kg；¹⁸F-F指2-［¹⁸F］FDG剂量为925 MBq/kg，¹⁸F-F^##指2-［¹⁸F］FDG剂量为1850 MBq/kg；@4 h指PD-L1抗体与2-［¹⁸F］FDG的给药时间窗为4 h)；C.2-［¹⁸F］FDG诱导MC38荷瘤小鼠免疫治疗的时间依赖性肿瘤生长曲线和生存曲线；D.ELISA法检测血液中细胞因子IFN-γ、TNF-α、IL-6水平的动态变化；E.记忆性T细胞浸润的流式细胞术分析(CD4⁺CD44^highCD62L^low和CD8⁺CD44^highCD62L^low)；F.用FlowJo v10软件定量分析脾脏总细胞中CD4⁺CD44^highCD62L^low细胞和CD8⁺CD44^highCD62L^low细胞比例；G.治愈小鼠的左后侧在第91天再次接种MC38细胞，并监测至第150天；H.2-［¹⁸F］FDG联合PD-L1单抗可增强持久免疫记忆

PD-L1:程序性死亡受体配体1；IFN：干扰素；TNF：肿瘤坏死因子；IL：白细胞介素；*P＜0.05；**P＜0.01；***P＜0.001；****P＜0.0001

进一步研究发现，联合治疗组小鼠脾脏内的TEM（CD8⁺/CD4⁺CD44^highCD62L^low）维持在较高水平，提示小鼠有免疫记忆产生；在治疗过程中，血清中促炎细胞因子IFN-γ、肿瘤坏死因子（TNF) -α及IL-6，TIME中Th1及CTLs于7 d内维持在较高水平，而单独2-［¹⁸F］FDG或PD-L1治疗组的细胞因子水平和CTLs水平轻度增高并于7 d内耗竭。Tregs（CD45⁺CD4⁺FOXP3⁺）、M2型巨噬细胞(CD206⁺F4/80⁺)及MDSC（CD45⁺CD11b⁺Gr-1⁺）仅在联合治疗组中下降，M1型巨噬细胞（iNOS⁺F4/80⁺）和DCs（CD80⁺CD86⁺）则显著上调。

以上发现提示联合治疗对TIME的调控作用，相比于单独治疗组，联合治疗不仅更大程度地激活了小鼠的适应性免疫，还降低了免疫抑制性细胞水平，改善了免疫治疗的耐药性。

本课题组进一步探究了2-［¹⁸F］FDG的免疫调节作用，发现2-［¹⁸F］FDG在体外可导致DNA损伤，但仍保持复制及自我修复能力（图2A,2B）。

图2 2-［¹⁸F］FDG诱导的PD-L1上调通过NF-κB/IRF3途径介导

A.MC38细胞与2-［¹⁸F］FDG共孵育不同时间后的细胞活力检测；B.用2-［¹⁸F］FDG (3.7 MBq) 照射MC38细胞24 h，用γH2AX和EdU染色检测DNA DSB和DNA修复水平；C、D.2-［¹⁸F］FDG激活NF-κB和IRF3信号通路的验证^[56]

PD-L1：同图1

同时，2-［18F］FDG通过激活NF-κB P65通路，与IRF3相互作用，促进PD-L1的转录，在体外呈时间及剂量依赖性上调；进一步研究发现，STAT1、STAT3和IRF1的敲低影响NF-κB P65的磷酸化(图2C, 2D及图3)，因此PD-L1的上调也受STAT1/3-IRF1通路调控^[56]。

图3 2-［¹⁸F］FDG诱导的PD-L1上调与经典STAT1/3-IRF1通路相关

A.与2-［¹⁸F］FDG共孵育24 h后肿瘤细胞中DEGs的热图；B.2-［¹⁸F］FDG激活STAT1/3和IRF1信号通路与PD-L1上调相关^[56]

PD-L1：同图1

本课题组亦探索了纯发射γ射线的核素^99mTc标记的RGD对TIME的调节作用，发现同2-［¹⁸F］FDG一样，^99mTc刺激PD-L1在多种肿瘤细胞系中上调。随后比较了不同联合治疗方案的疗效，发现18.5 MBq或37 MBq ^99mTc-RGD联合400 μg PD-L1抗体在4 h时间窗给药效果最佳，部分小鼠的肿瘤完全治愈(6/8)且90 d内无复发^[57]。

3 小结与展望

总结近5年发表的放射性药物联合ICI协同抗肿瘤治疗的临床前研究发现，该类研究主要围绕治疗核素展开，包括经典的β核素（¹⁷⁷Lu、⁹⁰Y）以及α核素（²¹¹At、²²⁵Ac）等（表1）。

表1 近5年发表的放射性药物联合ICI治疗的临床前研究

TRT上调了PD-L1表达，增加CTLs及Th1细胞浸润，为后续ICI治疗提供了免疫原性微环境。联合治疗可进一步调控TIME，增加促炎细胞因子、TEM、M1巨噬细胞等浸润，下调Tregs及MDSC，有效抑制肿瘤生长，延长生存期，产生免疫记忆效应，部分研究甚至达到完全缓解。然而，也有研究指出，联合治疗未能正向调控TIME，未能提高TRT的疗效^[23,35,48]。

本团队既往研究发现，¹³¹I刺激了肿瘤细胞PD-L1表达呈时间及剂量依赖性上调^[58]。故在此基础上，进一步选用β核素¹⁷⁷Lu及⁶⁴Cu进行探索，发现⁶⁴Cu不仅可用于诊断，还具有治疗潜力^[59]，用⁶⁴Cu-DER联合PD-L1抗体的协同抗肿瘤治疗大大提升了⁶⁴Cu-TRT的疗效^[32]。

此外，基于2-［¹⁸F］FDG的相关研究结果^[53-55]，本研究团队发现，2-［¹⁸F］FDG诱导PD-L1的表达上调由NF-κB/IRF3和STAT1/3-IRF1信号通路介导，与DNA损伤通路激活有关，且放射性刺激与PD-L1抗体的给药时间窗对于治疗效果至关重要。在2-［¹⁸F］FDG刺激下，PD-L1上调需要一定时间，而¹⁸F半衰期短，难以长时间诱导PD-L1上调，因此4 h的时间窗最为合适^[56]。

综上所述，诊断放射性药物联合PD-L1抗体的免疫治疗新范式可以调控TIME，显著提高疗效。与TRT相比，诊断放射性药物具有多种优势，包括可及性高，制备简单及血液毒性小等，如能将诊断性核素标记的PET/SPECT示踪剂应用于肿瘤联合治疗，将极大拓宽其应用范围，改善现有治疗性核素产量有限，特别是我国目前严重依赖进口的现状，拓展传统的肿瘤治疗模式。

因此，未来研究中应进一步拓展诊断放射性药物联合免疫治疗的组合，探索不同核素对肿瘤细胞及微环境中其他细胞的影响，促进此种治疗新范式的临床转化。

参考文献

［1］FDA approves anti-LAG3 checkpoint［J］. Nat Biotechnol, 2022,40:625.

［2］Yi M, Zheng X, Niu M, et al. Combination strategies with PD-1/PD-L1 blockade: current advances and future directions［J］. Mol Cancer, 2022,21:28.

［3］de Miguel M,Calvo E. Clinical Challenges of Immune Checkpoint Inhibitors［J］. Cancer Cell, 2020,38:326-333.

［4］Fradet Y, Bellmunt J, Vaughn DJ, et al. Randomized phase III KEYNOTE-045 trial of pembrolizumab versus paclitaxel, docetaxel, or vinflunine in recurrent advanced urothelial cancer: results of ＞2 years of follow-up［J］. Ann Oncol, 2019,30:970-976.

［5］McLaughlin M, Patin EC, Pedersen M, et al. Inflammatory microenvironment remodelling by tumour cells after radiotherapy［J］. Nat Rev Cancer, 2020,20:203-217.

［6］Pouget JP, Lozza C, Deshayes E, et al. Introduction to radiobiology of targeted radionuclide therapy［J］. Front Med (Lausanne), 2015,2:12.

［7］Deng L, Liang H, Xu M, et al. STING-Dependent Cytosolic DNA Sensing Promotes Radiation-Induced Type I Interferon-Dependent Antitumor Immunity in Immunogenic Tumors［J］. Immunity, 2014,41:843-852.

［8］Zhang X, Zhang H, Zhang J, et al. The paradoxical role of radiation-induced cGAS-STING signalling network in tumour immunity［J］. Immunology, 2023,168:375-388.

［9］Lan Y, Moustafa M, Knoll M, et al. Simultaneous targeting of TGF-beta/PD-L1 synergizes with radiotherapy by reprogramming the tumor microenvironment to overcome immune evasion［J］. Cancer Cell, 2021,39:1388-403. e10.

［10］Sha CM, Lehrer EJ, Hwang C, et al. Toxicity in combination immune checkpoint inhibitor and radiation therapy: A systematic review and meta-analysis［J］. Radiother Oncol, 2020,151:141-148.

［11］Procureur A, Simonaggio A, Bibault JE, et al. Enhance the Immune Checkpoint Inhibitors Efficacy with Radiotherapy Induced Immunogenic Cell Death: A Comprehensive Review and Latest Developments［J］. Cancers (Basel), 2021,13:678.

［12］Twyman-Saint Victor C, Rech AJ, Maity A, et al. Radiation and dual checkpoint blockade activate non-redundant immune mechanisms in cancer［J］. Nature, 2015,520:373-377.

［13］Formenti SC,Demaria S. Systemic effects of local radiotherapy［J］. Lancet Oncol, 2009,10:718-726.

［14］Formenti SC, Rudqvist NP, Golden E, et al. Radiotherapy induces responses of lung cancer to CTLA-4 blockade［J］. Nat Med, 2018,24:1845-1851.

［15］Kleinendorst SC, Oosterwijk E, Bussink J, et al. Combining Targeted Radionuclide Therapy and Immune Checkpoint Inhibition for Cancer Treatment［J］. Clin Cancer Res, 2022,28:3652-3657.

［16］Sun Q, Li J, Ding Z, et al. Radiopharmaceuticals heat anti-tumor immunity［J］. Theranostics, 2023,13:767-786.

［17］Rouanet J, Benboubker V, Akil H, et al. Immune checkpoint inhibitors reverse tolerogenic mechanisms induced by melanoma targeted radionuclide therapy［J］. Cancer Immunol Immunother, 2020,69:2075-2088.

［18］Jagodinsky JC, Jin WJ, Bates AM, et al. Temporal analysis of type 1 interferon activation in tumor cells following external beam radiotherapy or targeted radionuclide therapy［J］. Theranostics, 2021,11:6120-6137.

［19］Patel RB, Hernandez R, Carlson P, et al. Low-dose targeted radionuclide therapy renders immunologically cold tumors responsive to immune checkpoint blockade［J］. Sci Transl Med, 2021,13:eabb3631.

［20］Grzmil M, Boersema P, Sharma A, et al. Comparative analysis of cancer cell responses to targeted radionuclide therapy (TRT) and external beam radiotherapy (EBRT)［J］. J Hematol Oncol, 2022,15:123.

［21］Zhang J, Yang M, Fan X, et al. Biomimetic radiosensitizers unlock radiogenetics for local interstitial radiotherapy to activate systematic immune responses and resist tumor metastasis［J］. J Nanobiotechnology, 2022,20:103.

［22］Brown R, Hernandez R, Grudzinski JJ, et al. Ability of Molecular Targeted Radionucleotide Therapy and Anti-CTLA-4 to Prevent Spontaneous Metastases in a Preclinical Lewis Lung Carcinoma Model［J］. Int J Radiat Oncol Biol Phys, 2019,105:E498-E499.

［23］Potluri HK, Ferreira CA, Grudzinski J, et al. Antitumor efficacy of 90Y-NM600 targeted radionuclide therapy and PD-1 blockade is limited by regulatory T cells in murine prostate tumors［J］. J Immunother Cancer, 2022,10:e005060.

［24］Lutetium （Lu-177） Dotatate Approved by FDA［J］. Cancer Discov, 2018,8:OF2.

［25］Fallah J, Agrawal S, Gittleman H, et al. FDA Approval Summary: lutetium （Lu-177） vipivotide tetraxetan for patients with metastatic castration-resistant prostate cancer［J］. Clin Cancer Res, 2023,29:1651-1657.

［26］Kim C, Liu SV, Subramaniam DS, et al. Phase Ⅰ study of the 177Lu-DOTA(0)-Tyr(3)-Octreotate (lutathera) in combination with nivolumab in patients with neuroendocrine tumors of the lung［J］. J Immunother Cancer, 2020,8:e000980.

［27］Ferdinandus J, Fendler WP, Lueckerath K, et al. Response to Combined Peptide Receptor Radionuclide Therapy and Checkpoint Immunotherapy with Ipilimumab Plus Nivolumab in Metastatic Merkel Cell Carcinoma［J］. J Nucl Med, 2022,63:396-398.

［28］Lin AL, Tabar V, Young RJ, et al. Synergism of Checkpoint Inhibitors and Peptide Receptor Radionuclide Therapy in the Treatment of Pituitary Carcinoma［J］. J Endocr Soc, 2021,5:bvab133.

［29］Prasad V, Zengerling F, Steinacker JP, et al. First Experiences with 177Lu-PSMA Therapy in Combination with Pembrolizumab or After Pretreatment with Olaparib in Single Patients［J］. J Nucl Med, 2021,62:975-978.

［30］Chen H, Zhao L, Fu K, et al. Integrin αυβ3-targeted radionuclide therapy combined with immune checkpoint blockade immunotherapy synergis-tically enhances anti-tumor efficacy［J］. Theranostics, 2019,9:7948-7960.

［31］Wen XJ, Zeng XY, Shi CR, et al. Optimum combination of radiopharmaceuticals-based targeting-triggering-therapy effect and PD-L1 blockade immunotherapy［J］. Adv Ther, 2022,6:2200193.

［32］Wen X, Zeng X, Liu J, et al. Synergism of ⁶⁴Cu-Labeled RGD with Anti-PD-L1 Immunotherapy for the Long-Acting Antitumor Effect［J］. Bioconjug Chem, 2022,33:2170-2179

［33］Guzik P, Siwowska K, Fang HY, et al. Promising potential of ［¹⁷⁷Lu］Lu-DOTA-folate to enhance tumor response to immunotherapy-a preclinical study using a syngeneic breast cancer model［J］. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2021,48:984-994.

［34］Ren J, Xu M, Chen J, et al. PET imaging facilitates antibody screening for synergistic radioimmunotherapy with a ¹⁷⁷Lu-labeled alphaPD-L1 antibody［J］. Theranostics, 2021,11:304-315.

［35］Malo ME, Allen KJH, Jiao R, et al. Mechanistic Insights into Synergy between Melanin-Targeting Radioimmun-otherapy and Immunotherapy in Experimental Melanoma［J］. Int J Mol Sci, 2020,21:8721.

［36］Choi J, Beaino W, Fecek RJ, et al. Combined VLA-4-Targeted Radionuclide Therapy and Immunotherapy in a Mouse Model of Melanoma［J］. J Nucl Med, 2018,59:1843-1849.

［37］Vito A, Rathmann S, Mercanti N, et al. Combined Radionuclide Therapy and Immunotherapy for Treatment of Triple Negative Breast Cancer［J］. Int J Mol Sci, 2021,22:4843.

［38］Stap J, Krawczyk PM, Van Oven CH, et al. Induction of linear tracks of DNA double-strand breaks by alpha-particle irradiation of cells［J］. Nat Methods, 2008,5:261-266.

［39］Czernin J, Current K, Mona CE, et al. Immune-Checkpoint Blockade Enhances 225Ac-PSMA617 Efficacy in a Mouse Model of Prostate Cancer［J］. J Nucl Med, 2021,62:228-231.

［40］Josefsson A, Nedrow JR, Park S, et al. Combining alpha-particle radiopharmaceutical therapy using Actinium-225 and immunotherapy with anti-PD-L1 antibodies in a murine immunocompetent metastatic breast cancer model［J］. Cancer Res, 2016,76:3052.

［41］Dabagian H, Taghvaee T, Martorano P, et al. PARP Targeted Alpha-Particle Therapy Enhances Response to PD-1 Immune-Checkpoint Blockade in a Syngeneic Mouse Model of Glioblastoma［J］. ACS Pharmacol Transl Sci, 2021,4:344-351.

［42］Zhang J, Li F, Yin Y, et al. Alpha radionuclide-chelated radioimmunotherapy promoters enable local radiotherapy/chemodynamic therapy to discourage cancer progression［J］. Biomater Res, 2022,26:44.

［43］Malamas AS, Gameiro SR, Knudson KM, et al. Sublethal exposure to alpha radiation 223Ra dichloride) enhances various carcinomas' sensitivity to lysis by antigen-specific cytotoxic T lymphocytes through calreticulin-mediated immunogenic modulation［J］. Oncotarget, 2016,7:86937-86947.

［44］Creemers JHA, van der Doelen MJ, van Wilpe S, et al. Immunophenotyping Reveals Longitudinal Changes in Circulating Immune Cells During Radium-223 Therapy in Patients With Metastatic Castration-Resistant Prostate Cancer［J］. Front Oncol, 2021,11:667658.

［45］Vardaki I, Corn P, Gentile E, et al. Radium-223 Treatment Increases Immune Checkpoint Expression in Extracellular Vesicles from the Metastatic Prostate Cancer Bone Microenvironment［J］. Clin Cancer Res, 2021,27:3253-3264.

［46］Fong L, Morris MJ, Sartor O, et al. A Phase Ib Study of Atezolizumab with Radium-223 Dichloride in Men with Metastatic Castration-Resistant Prostate Cancer［J］. Clin Cancer Res, 2021,27:4746-4756.

［47］Li M, Liu D, Lee D, et al. Targeted Alpha-Particle Radiotherapy and Immune Checkpoint Inhibitors Induces Cooperative Inhibition on Tumor Growth of Malignant Melanoma［J］. Cancers (Basel), 2021,13:3676.

［48］Nosanchuk JD, Jeyakumar A, Ray A, et al. Structure-function analysis and therapeutic efficacy of antibodies to fungal melanin for melanoma radioimmunotherapy［J］. Sci Rep, 2018,8:5466.

［49］Perrin J, Capitao M, Allard M, et al. Targeted Alpha Particle Therapy Remodels the Tumor Microenvironment and Improves Efficacy of Immunotherapy［J］. Int J Radiat Oncol Biol Phys, 2022,112:790-801.

［50］Gorin JB, Menager J, Gouard S, et al. Antitumor immunity induced after alpha irradiation［J］. Neoplasia, 2014,16:319-328.

［51］Lejeune P, Cruciani V, Berg-Larsen A, et al. Immunostimulatory effects of targeted thorium-227 conjugates as single agent and in combination with anti-PD-L1 therapy［J］. J Immunother Cancer, 2021,9:e002387.

［52］Hagemann UB, Ellingsen C, Schuhmacher J, et al. Mesothelin-Targeted Thorium-227 Conjugate (MSLN-TTC): Preclinical Evaluation of a New Targeted Alpha Therapy for Mesothelin-Positive Cancers［J］. Clin Cancer Res, 2019,25:4723-4734.

［53］Moadel RM, Nguyen AV, Lin EY, et al. Positron emission tomography agent 2-deoxy-2-［¹⁸F］fluoro-D-glucose has a therapeutic potential in breast cancer［J］. Breast Cancer Res, 2003,5:R199-R205.

［54］Moadel RM, Weldon RH, Katz EB, et al. Positherapy: targeted nuclear therapy of breast cancer with 18F-2-deoxy-2-fluoro-D-glucose［J］. Cancer Res, 2005,65:698-702.

［55］Fang S, Wang J, Jiang H, et al. Experimental study on the therapeutic effect of positron emission tomography agent［¹⁸F］-labeled 2-deoxy-2-fluoro-d-glucose in a colon cancer mouse model［J］. Cancer Biother Radiopharm, 2010,25:733-740.

［56］Wen X, Shi C, Zeng X, et al. A Paradigm of Cancer Immunotherapy Based on 2-［¹⁸F］FDG and Anti-PD-L1 mAb Combination to Enhance the Antitumor Effect［J］. Clin Cancer Res, 2022,28:2923-2937.

［57］文雪君, 周吴昊, 郭志德, 等. 整合素αυβ3 靶向放射性药物99mTc-RGD联合抗PD-L1肿瘤免疫治疗增强抗肿瘤效果的研究［J］. 协和医学杂志, 2023, 14：766-773.

［58］Wen X, Zeng X, Cheng X, et al. PD-L1-Targeted Radionuclide Therapy Combined with alpha PD-L1 Antibody Immunotherapy Synergistically Improves the Antitumor Effect［J］. Mol Pharm, 2022,19:3612-3622.

［59］Gutfilen B, Souza SA,Valentini G. Copper-64: a real theranostic agent［J］. Drug Des Devel Ther, 2018,12:3235-3245.